| MOQ: | 960T |
| preço: | USD |
| standard packaging: | 48 T/saco |
| Delivery period: | Dependendo da quantidade da encomenda |
| Método do pagamento: | L/C,T/T |
| Supply Capacity: | 20.000 testes/mensal |
LyoDt® Reagente de detecção de PCR em tempo real liofilizado para 48
Manual de Uso1. DESCRIÇÃO
Vibrio cholerae é uma bactéria Gram-negativa que causa cólera, uma doença infecciosa intestinal aguda caracterizada por início rápido, alta transmissibilidade e mortalidade significativa. Como uma doença sujeita a quarentena sob os Regulamentos Sanitários Internacionais, inclui principalmente os sorogrupos O1 e O139
48Este produto é um reagente de PCR em tempo real liofilizado <
detecção de Vibrio cholerae O148< de Vibrio cholerae O148 2. ESPECIFICAÇÕES E COMPOSIÇÃO Cat. Nº
Descrição
|
QTD |
FP- |
SF |
|
-014) Controle Positivo |
® Reagente de detecção de PCR em tempo real liofilizado para Vibrio cholerae O148 |
FP- SF |
|
-014) Controle Positivo1 |
Tubo |
9 Saco plástico selável |
|
1 saco |
3. ARMAZENAMENTO |
E PRAZO DE VALIDADE |
Armazenar à temperatura ambiente
(5-30°C )45B) Abra os tubos e descarte a(s) tampa(s) (não adequada para máquinas de PCR em tempo real) e prepare a mistura de reação no gelo conforme abaixo.< Depois que a embalagem a vácuo for aberta, armazene os produtos não utilizados no saco plástico selável fornecido com os dessecantes, < no saco de folha de alumínio.CUIDADO:A diminuição do pellet do reagente é uma indicação de que a umidade está entrando no tubo e o reagente está úmido. Quaisquer reagentes com tamanho de pellet significativamente menor do que o normal devem ser descartados ou testados com controle positivo antes do uso
para teste de amostra
. 4. EQUIPAMENTOS E REAGENTES ADICIONAIS NECESSÁRIOS1)
Instrumento de PCR em tempo real
APip
O controle positivo pode ser armazenado à temperatura ambiente antes da reidratação e pontas3) Nuclease
Mágua livre4) Kit de extração de ácido nucleico
Defina o volume da reação como 25μl e o procedimento de amplificação de PCR conforme abaixo. Colete a fluorescência FAMABI 7500/Fast, Roche LightCycler 480II, BioRad CFX96, Bioer LineGene 9600
.
6. AMOSTRAS ACEITÁVEIS<
7. PROCEDIMENTO DE OPERAÇÃO
1)
Nucleico
Acido e xtraçãoExtrair DNA
de amostras usando um kit de extração adequado. Recomenda-se que o DNA seja eluído com cerca de 100μl de tampão de eluição (TEse H livre de nuclease 2Ovortexado em baixa velocidade por 15-20 segundos e centrifugado em baixa velocidade por 15-20 segundos. Use imediatamente ou armazene na etapa final de B) Abra os tubos e descarte a(s) tampa(s) (não adequada para máquinas de PCR em tempo real) e prepare a mistura de reação no gelo conforme abaixo.. O ácido nucleico purificado deve ser usado imediatamente ou armazenado a -20°C. deve ser reidratado antes do uso Preparação do Controle Positivo
O controle positivo pode ser armazenado à temperatura ambiente antes da reidrataçãopor até 12 meses
. Ele deve ser reidratado antes do uso adicionando 250 μl de tampão TE ou nuclease-free H2O, vortexado em baixa velocidade por 15-20 segundos e centrifugado em baixa velocidade por 15-20 segundos. Use imediatamente ou armazene a -20°C.45<
Mistura PreparaçãoA) Abra a embalagem a vácuo e retire a tira de 8 tuboss
contendo o reagente. Verifique se o pellet está no fundo do tubo(Corte o número de tubos conforme necessário se necessário ). Se os tubos fornecidos não forem compatíveis com o seu instrumento, transfira o pellet do reagente para um tubo óptico compatível com o seu instrumento.B) Abra os tubos e descarte a(s) tampa(s) (não adequada para máquinas de PCR em tempo real) e prepare a mistura de reação no gelo conforme abaixo.Componente
Vol. /teste
|
Reagente liofilizado |
1 |
|
tubo |
(2μl)Modelo D |
|
NA/Controle Positivo/Controle Negativo*23μlTotal |
25μl |
|
* Água livre de nuclease pode ser usada como controle negativo. |
C) |
Tampe a PCR usando tampas (tiras) adequadas para PCR em tempo real
(não fornecido).D) Vortexe os tubos em baixa velocidade por 10~15 segundos e centrifuge a 3000 rpm por 20 segundos e coloque-os em um instrumento de PCR em tempo real.4)
Configuração de RT-PCR
Defina o volume da reação como 25μl e o procedimento de amplificação de PCR conforme abaixo. Colete a fluorescência FAMa 60°C e selecione NENHUM como referência passiva.
Passo Temp.
|
Tempo |
Ciclos |
Pré-desnaturação |
9 |
|
4 |
°C5) 45 |
1Amplificação |
9 |
|
4 |
°C5) 45 |
60°C |
4 |
|
0seg |
5) Resultado |
Análise e Interpretação Modelo
|
CTInterpretação |
Contaminação cruzada, experimento inválido. |
CT≤35 |
|
Reagente bom. |
positivo |
CT>40 ou sem CT |
|
Sem contaminação, experimento válido. |
negativo. |
<35 |
|
Contaminação cruzada, experimento inválido.35 |
|
|
|
CAmostra |
CT≤35 |
|
|
O1 |
positivo |
35< |
|
CT≤40O1suspeito, confirme por reteste. |
O1 |
|
|
negativo. |
|
| MOQ: | 960T |
| preço: | USD |
| standard packaging: | 48 T/saco |
| Delivery period: | Dependendo da quantidade da encomenda |
| Método do pagamento: | L/C,T/T |
| Supply Capacity: | 20.000 testes/mensal |
LyoDt® Reagente de detecção de PCR em tempo real liofilizado para 48
Manual de Uso1. DESCRIÇÃO
Vibrio cholerae é uma bactéria Gram-negativa que causa cólera, uma doença infecciosa intestinal aguda caracterizada por início rápido, alta transmissibilidade e mortalidade significativa. Como uma doença sujeita a quarentena sob os Regulamentos Sanitários Internacionais, inclui principalmente os sorogrupos O1 e O139
48Este produto é um reagente de PCR em tempo real liofilizado <
detecção de Vibrio cholerae O148< de Vibrio cholerae O148 2. ESPECIFICAÇÕES E COMPOSIÇÃO Cat. Nº
Descrição
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QTD |
FP- |
SF |
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-014) Controle Positivo |
® Reagente de detecção de PCR em tempo real liofilizado para Vibrio cholerae O148 |
FP- SF |
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-014) Controle Positivo1 |
Tubo |
9 Saco plástico selável |
|
1 saco |
3. ARMAZENAMENTO |
E PRAZO DE VALIDADE |
Armazenar à temperatura ambiente
(5-30°C )45B) Abra os tubos e descarte a(s) tampa(s) (não adequada para máquinas de PCR em tempo real) e prepare a mistura de reação no gelo conforme abaixo.< Depois que a embalagem a vácuo for aberta, armazene os produtos não utilizados no saco plástico selável fornecido com os dessecantes, < no saco de folha de alumínio.CUIDADO:A diminuição do pellet do reagente é uma indicação de que a umidade está entrando no tubo e o reagente está úmido. Quaisquer reagentes com tamanho de pellet significativamente menor do que o normal devem ser descartados ou testados com controle positivo antes do uso
para teste de amostra
. 4. EQUIPAMENTOS E REAGENTES ADICIONAIS NECESSÁRIOS1)
Instrumento de PCR em tempo real
APip
O controle positivo pode ser armazenado à temperatura ambiente antes da reidratação e pontas3) Nuclease
Mágua livre4) Kit de extração de ácido nucleico
Defina o volume da reação como 25μl e o procedimento de amplificação de PCR conforme abaixo. Colete a fluorescência FAMABI 7500/Fast, Roche LightCycler 480II, BioRad CFX96, Bioer LineGene 9600
.
6. AMOSTRAS ACEITÁVEIS<
7. PROCEDIMENTO DE OPERAÇÃO
1)
Nucleico
Acido e xtraçãoExtrair DNA
de amostras usando um kit de extração adequado. Recomenda-se que o DNA seja eluído com cerca de 100μl de tampão de eluição (TEse H livre de nuclease 2Ovortexado em baixa velocidade por 15-20 segundos e centrifugado em baixa velocidade por 15-20 segundos. Use imediatamente ou armazene na etapa final de B) Abra os tubos e descarte a(s) tampa(s) (não adequada para máquinas de PCR em tempo real) e prepare a mistura de reação no gelo conforme abaixo.. O ácido nucleico purificado deve ser usado imediatamente ou armazenado a -20°C. deve ser reidratado antes do uso Preparação do Controle Positivo
O controle positivo pode ser armazenado à temperatura ambiente antes da reidrataçãopor até 12 meses
. Ele deve ser reidratado antes do uso adicionando 250 μl de tampão TE ou nuclease-free H2O, vortexado em baixa velocidade por 15-20 segundos e centrifugado em baixa velocidade por 15-20 segundos. Use imediatamente ou armazene a -20°C.45<
Mistura PreparaçãoA) Abra a embalagem a vácuo e retire a tira de 8 tuboss
contendo o reagente. Verifique se o pellet está no fundo do tubo(Corte o número de tubos conforme necessário se necessário ). Se os tubos fornecidos não forem compatíveis com o seu instrumento, transfira o pellet do reagente para um tubo óptico compatível com o seu instrumento.B) Abra os tubos e descarte a(s) tampa(s) (não adequada para máquinas de PCR em tempo real) e prepare a mistura de reação no gelo conforme abaixo.Componente
Vol. /teste
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Reagente liofilizado |
1 |
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tubo |
(2μl)Modelo D |
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NA/Controle Positivo/Controle Negativo*23μlTotal |
25μl |
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* Água livre de nuclease pode ser usada como controle negativo. |
C) |
Tampe a PCR usando tampas (tiras) adequadas para PCR em tempo real
(não fornecido).D) Vortexe os tubos em baixa velocidade por 10~15 segundos e centrifuge a 3000 rpm por 20 segundos e coloque-os em um instrumento de PCR em tempo real.4)
Configuração de RT-PCR
Defina o volume da reação como 25μl e o procedimento de amplificação de PCR conforme abaixo. Colete a fluorescência FAMa 60°C e selecione NENHUM como referência passiva.
Passo Temp.
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Tempo |
Ciclos |
Pré-desnaturação |
9 |
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4 |
°C5) 45 |
1Amplificação |
9 |
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4 |
°C5) 45 |
60°C |
4 |
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0seg |
5) Resultado |
Análise e Interpretação Modelo
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CTInterpretação |
Contaminação cruzada, experimento inválido. |
CT≤35 |
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Reagente bom. |
positivo |
CT>40 ou sem CT |
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Sem contaminação, experimento válido. |
negativo. |
<35 |
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Contaminação cruzada, experimento inválido.35 |
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CAmostra |
CT≤35 |
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O1 |
positivo |
35< |
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CT≤40O1suspeito, confirme por reteste. |
O1 |
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negativo. |
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